Забыли пароль?
Регистрация

О компании
Доставка
Каталог товаров
Контакты

Задать вопрос
Как сделать заказ
Рекомендации
Партнёрам

Получить консультацию

Сухая культуральная вирусвакцина против чумы мелких жвачных животных. Вакцина против чумы мелкого рогатого скота

Чума мелкого рогатого скота

Чума мелких животных (pestis ovium et caprarum) – остро протекающая, высококонтагиозная болезнь овец и коз, характеризующаяся лихорадкой, геморрагическим диатезом, язвенно-некротическим стоматитом, катарально-геморрагическим энтеритом, расстройством функции желудочно-кишечного тракта.

Этиология.Возбудитель болезни – РНК-геномный вирус, относящийся к семейству Paramixoviridae, подсемейству Morbillivirus, имеет слегка овальную форму, размеры от 150-700 нм до 200-400 нм. В антигенном и иммуногенном отношении близок к возбудителям чумы крупного рогатого скота, чумы плотоядных и кори.

Эпизоотологические данные.В естественных условиях болезнь поражает коз и овец всех возрастов, но тяжелее протекает у 2-18-месячного молодняка. Козы более восприимчивы, чем овцы. У крупного рогатого скота вирус вызывает бессимптомное течение инфекции. Источником возбудителя инфекции являются больные и находящиеся в инкубационном периоде животные, начиная с 3 дней после инфицирования. Некоторые исследователи считают, что резервуаром чумы мелких жвачных в природе служат дикие африканские животные, которые поддерживают существование вируса в межэпизоотический период, а также способствуют его распространению в период эпизоотии.

Вирус передается аэрогенным и алиментарным путем, при прямом контакте овец и коз с больными животными, а также через инфицированные корм, воду, подстилку, инвентарь, одежду обслуживающего персонала. Инфекция чаще всего возникает после завоза животных из неблагополучных по чуме хозяйств. Протекает в виде энзоотии, чаще проявляется в сезон дождей. Установлена периодичность эпизоотии в Сенегале, повторяющаяся через каждые 3-4 года. Летальность у коз может достигать 95%, у овец — 40%.

У овец нередко наблюдается осложнение болезни секундарной бактериальной инфекцией и паразитарной инвазией. У коз такие осложнения бывают при хроническом течении болезни. Чума мелкого рогатого скота обостряет латентные формы пироплазмоза, тейлериоза, анаплазмоза, трипаносомоза, кокцидиоза.

Течение и симптомы.Инкубационный период при чуме жвачных составляет 6-15 дн. Течение болезни у коз — сверхострое иострое, у овец –острое и подострое.

При сверхострой форме у коз наблюдают повышение температуры тела до 40-42°С, угнетение, отсутствие аппетита, истечение из носа, слезотечение, чихание, диарею. Продолжительность болезни — 4-5 дн. У большинства больных смерть наступает внезапно.

Острое течение у коз и овец характеризуется теми же признаками, что и сверхострое течение, однако болезнь длится 8-10 дн. Появляется кашель, на слизистой оболочке ротовой и носовой полости развиваются язвы, очаги некроза, из носа выделяются вначале серозные, а затем серозно-гнойные истечения. У самок наблюдают воспаление влагалища, у стельных животных — аборты. Заболевание часто заканчивается переходом в подострую форму болезни или гибелью.

При подостром течении у овец отмечают лихорадку пе-ремеживающегося типа, некроз и язвы вокруг ноздрей, ротовой полости, при осложненных формах — пневмонию, диарею, истощение и обезвоживание организма, парезы и параличи конечностей. В тяжелых случаях больные животные погибают через 2-3 недели. Вирус вызывает разрушение эпителия дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта и лимфоидных органов.

Диагноз.Диагноз ставят комплексно на основании клинических, патологоанатомических, эпизоотологических данных и результатов лабораторных исследований. Лабораторные исследования предусматривают выделение вируса в культуре клеток почки эмбриона овцы, идентификацию его иммунофлюоресцентным и электронномикроскопическим методами. Предложены также РСК и РИД, которые, однако, не позволяют отличить чуму мелкого рогатого скота от чумы крупного рогатого скота. В затруднительных случаях проводят гистологические исследования и постановку биопробы на 2-4-месячных козлятах. Характерным является обнаружение в эпителии слизистой оболочки ротовой полости, кишечника ив ретикулярных клетках лимфоидных органов эозинофильных цитоплазматических и внутриядерных телец-включений в гистологических препаратах.

Дифференциальный диагноз.Чуму мелких жвачных необходимо дифференцировать от ящура, катаральной лихорадки овец и болезни Найроби.

Лечение.Специфическая терапия чумы мелких жвачных не разработана. Рекомендуется симптоматическое лечение. Имеются сообщения о положительных результатах применения новарсенолбензола, позволяющего значительно сократить летальность среди больных животных.

Профилактика и меры борьбы.После переболевания чумой у животных наблюдается пожизненный иммунитет. Молодняк от иммунных маток приобретает колостральный иммунитет сроком до 6 мес. Для активной иммунизации применяют культуральную вакцину против чумы крупного рогатого скота.

При первичном появлении чумы жвачных в ранее благополучных зонах проводят уничтожение всего восприимчивого поголовья. В стационарно неблагополучных хозяйствах осуществляют профилактическую иммунизацию коз и овец вакциной против чумы крупного рогатого скота. В африканских странах вакцину под коммерческим названием Tissupest изготавливают из штамма Кабете О, которая выпускается в ампулах в лиофилизированном виде. Вакцина пригодна для употребления в течение 2 лет при хранении ее при температуре – 15°С, при температуре плюс 4°С пригодность ее ограничивается сроком в 1 мес. Вакцину применяют для профилактических и вынужденных прививок животных начиная с 2-месячного возраста. Препарат вводят подкожно в дозе 1 мл. Иммунитет формируется спустя 8 сут после прививки и сохраняется до 1 года.

Чума мелких жвачных | ГБУ РО «Ростовская облСББЖ с ПО»

Для Южного федерального округа России возникла реальная опасность возникновения чумы мелких жвачных (ЧМЖ). С января по март 2016 г. несколько вспышек зарегистрировано в Грузии.

Чума мелких жвачных – это вирусная болезнь овец и коз, протекает остро и подостро, характеризуется некротическим стоматитом и катарально-геморрагическими поражениями кишечника и лимфоидной системы. Источником ЧМЖ являются как больные, так и инфицированные животные, находящиеся в инкубационном периоде болезни. После переболевания формируется стойкий иммунитет, обеспечивающий устойчивость их к повторному инфицированию.

УСТОЙЧИВОСТЬ ВИРУСА. Он чувствителен к большинству дезинфицирующих средств. Так, 2 %-ные растворы фенола и едкого натрия инактивируют вирус за 24 часа. При проведении противоэпизоотических мероприятий используют следующие дезинфектанты: горячий 2% раствор NaOH, 20% взвесь свежегашеной извести, осветленный раствор хлорной извести (содержание активного хлора – 4%) или гипохлорит натрия (2% активного хлора), из расчёта 1,5 л раствора на 1 м² площади, 2% раствор формальдегида. Вирус обезвреживается при 70° С в течение 60 минут, быстро инактивируется под действием ультрафиолетовых прямых солнечных лучей, плохо переносит замораживание и оттаивание. Однако, длительно сохраняет инфекционную активность в охлажденных и замороженных тканях при температурах минус 60°С и ниже.

ФАКТОРЫ ПЕРЕДАЧИ И ПЕРЕНОСЧИКИ ВИРУСА.

Аэрогенный путь передачи возбудителя является основным, но возможны также алиментарный и контактный – через загрязненные корма и предметы ухода за животными, инфицированные экскретами и секретами больных животных.

КЛИНИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ. Протекает остро и подостро. Инкубационный период — от 6 до 15 дней. При остром течении – повышение температуры тела до 41—41,5°С. Затем – угнетение общего состояния, отсутствие аппетита. Носовое зеркальце сухое, слизистые оболочки ротовой и носовой полостей воспалены. Появляются зоны гиперемии, затем очаги некроза, на месте которых образуются язвы. Истечение из носа и ротовой полости сначала слизисто-серозное, затем гнойное с гнилостным ихорозным запахом. Появляются признаки пневмонии. На 5 – 10-й день – гибель. Летальность у коз может достигать 95% у овец — 40%.

При подостром течении первые признаки появляются только на 5 – 10-е сутки в виде перемежающейся лихорадки, легкого угнетения и истечения из носовой и ротовой полостей. На 15—18-й день появляются признаки пневмонии (в результате осложнения вторичной микрофлорой) и поражения желудочно-кишечного тракта (диарея). При летальном исходе эти признаки прогрессируют, наступает обезвоживание организма, и животное погибает через 2—3 недели от начала болезни. При благоприятном исходе признаки постепенно затухают, происходит заживление язв и животные выздоравливают.

ДИАГНОСТИКА. При типичном течении болезни диагноз ставят на основании клинических симптомов и патоморфологических изменений. Для лабораторных исследований берут пробы органов и тканей больных животных или сыворотки от переболевших.

ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНЫЙ ДИАГНОЗ. Чуму мелких жвачных необходимо дифференцировать от ящура, катаральной лихорадки овец.

ЛЕЧЕНИЕ. Специфическая терапия чумы мелких жвачных не разработана. Рекомендуется симптоматическое лечение. Имеются сообщения о положительных результатах применения новарсенолбензола.

РАСПРОСТРАНЕНИЕ ЧМЖ В МИРЕ. В период 2001 – 2011 гг. чума охватывала 35 стран в Африке и 21 – в Азии. Турция, Иран, Индия, Непал, Оман, Йемен и др. В Таджикистане циркуляция вируса среди животных в некоторых стадах составляла около 80%. В 2003 г. в южной части территории Республики Казахстан произошла вспышка чумы мелких жвачных животных. В 2012 г. очаги вспышек болезни: в Алжире, Египте, Тунисе, Демократической республике Конго, в 2014 году Китае. С января по март 2016 года произошло несколько вспышек в Грузии, одна в Алжире.

Для Российской Федерации реальная опасность возникновения ЧМЖ представляет для Северо-Кавказского и Южного Федеральных округов, а также для зон отгонно-пастбищного животноводства Уральского, Сибирского и Дальневосточного федеральных округов.

ПРОФИЛАКТИКА И МЕРЫ БОРЬБЫ. В неблагополучных зонах по чуме мелких жвачных восприимчивым животным прививают живую культуральную вакцину против чумы крупного рогатого скота (штамм TCRV) или аттенуированный вирус чумы мелких жвачных . Препараты создают иммунитет продолжительностью более одного года. При появлении болезни в новых очагах уничтожают всех больных и подозреваемых в заражении животных. В угрожаемой зоне овцам и козам прививают одну из указанных вакцин и накладывают карантин. Он предусматривает ограничение вывоза животных (овец и коз) из неблагополучной зоны в течение 2 месяцев. Ввоз разрешается через 14 дней после прививки. Все продукты животноводства обеззараживают и используют на месте.ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ ВЛАДЕЛЬЦАМ ЖИВОТНЫХ:

Для недопущения этого опасного заболевания необходимо:

– не допускать приобретения животных без ветеринарных сопроводительных документов, подтверждающих их здоровье;

– приобретать животных только из благополучных хозяйств.

– карантинировать в течении 30 дней ввезённых животных для проведения необходимых исследований и обработок;

– регистрировать животных в сельских администрациях и государственной ветеринарной службе для получения идентификационного номера;

– оборот, перемещение, сдачу на убой, выгон, размещение на пастбище, перегруппировки животных, реализацию животноводческой продукции производить только с ведома и под контролем госветслужбы;

– обо всех случаях подозрения по заболеванию или падежа животных своевременно информировать ветеринарную службу.

Главный ветеринарный врач городской СББЖ Волгодонского филиала

А.П. Кожевников

rostoblvet.ru

Чума мелких животных (pestis ovium et caprarum)

Этиология. Возбудитель болезни – РНК-геномный вирус, относящийся к семейству Paramixoviridae, подсемейству Morbillivirus, имеет слегка овальную форму, размеры от 150-700 нм до 200-400 нм. В антигенном и иммуногенном отношении близок к возбудителям чумы крупного рогатого скота, чумы плотоядных и кори.

У крупного рогатого скота вирус вызывает бессимптомное течение инфекции. Источником возбудителя инфекции являются больные и находящиеся в инкубационном периоде животные, начиная с 3 дней после инфицирования. Некоторые исследователи считают, что резервуаром чумы мелких жвачных в природе служат дикие африканские животные, которые поддерживают существование вируса в межэпизоотический период, а также способствуют его распространению в период эпизоотии.

Течение и симптомы. Инкубационный период при чуме жвачных составляет 6-15 дн. Течение болезни у коз — сверхострое и острое, у овец –острое и подострое.

Диагноз. Диагноз ставят комплексно на основании клинических, патологоанатомических, эпизоотологических данных и результатов лабораторных исследований. Лабораторные исследования предусматривают выделение вируса в культуре клеток почки эмбриона овцы, идентификацию его иммунофлюоресцентным и электронномикроскопическим методами. Предложены также РСК и РИД, которые, однако, не позволяют отличить чуму мелкого рогатого скота от чумы крупного рогатого скота. В затруднительных случаях проводят гистологические исследования и постановку биопробы на 2-4-месячных козлятах. Характерным является обнаружение в эпителии слизистой оболочки ротовой полости, кишечника ив ретикулярных клетках лимфоидных органов эозинофильных цитоплазматических и внутриядерных телец-включений в гистологических препаратах.

Дифференциальный диагноз. Чуму мелких жвачных необходимо дифференцировать от ящура, катаральной лихорадки овец и болезни Найроби.

Лечение. Специфическая терапия чумы мелких жвачных не разработана. Рекомендуется симптоматическое лечение. Имеются сообщения о положительных результатах применения новарсенолбензола, позволяющего значительно сократить летальность среди больных животных.

Профилактика и меры борьбы. После переболевания чумой у животных наблюдается пожизненный иммунитет. Молодняк от иммунных маток приобретает колостральный иммунитет сроком до 6 мес. Для активной иммунизации применяют культуральную вакцину против чумы крупного рогатого скота.

webmvc.com

Ассоциированная вакцина против оспы овец и чумы мелких жвачных животных

Изобретение относится к области ветеринарии. Вакцина содержит суспензию культуральных вакцинных штаммов Б/5-96 вируса оспы овец и 45G37/35-K вируса чумы мелких жвачных животных с активностью не менее 4,5 lg ТЦД50/см3, лактозо-пептонный или сахарозо-желатиновый стабилизатор и деминерализованную воду при следующем содержании компонентов, об.%: вакцинный штамм Б/5-96 вируса оспы овец 22,0-27,0, вакцинный штамм 45G37/35-K вируса чумы мелких жвачных животных - 22,0-27,0, лактозо-пептонный или сахарозо-желатиновый стабилизатор - 40,0-44,0 деминерализованная вода - остальное. Вакцина обладает высокой иммуногенностью и ареактогенностью, безвредна и стабильна при хранении. 3 табл.

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к применению вакцинных препаратов для одновременной специфической профилактики оспы овец (OO) и чумы мелких жвачных животных (ЧМЖЖ).

За рубежом для профилактики этих болезней применяют вакцины, изготовленные из штаммов Peregro, RM/65 и Romanian вируса оспы овец [1, 2], а также штаммы «pprv 75/1 L К6 ВК2 Vero 70» и «Nigeria 75/1» вируса чумы мелких жвачных (Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. PART 2. SECTION 2.1. Chapter 2.1.5. [Электронный ресурс] / OIE.. - www.oie.int/eng/normes/mmanual/A_0028htpn.

В настоящее время для профилактики чумы мелких жвачных животных и оспы овец широко применяются культуральные моновакцины. Так, в России и странах СНГ для конструирования вакцины против оспы овец рекомендованы вакцинные штаммы НИСХИ, ВНИИЗЖ и Б/5-96 [3-5]. Для изготовления вирусвакцины против чумы мелких жвачных используют штамм «45G37/35-К» [6]. Указанные штаммы выращивают в первичных культурах клеток почки ягненка (ПЯ) и перевиваемых культурах клеток почки овцы (ПО) и гонады козы (ГК). С этой же целью используют вакцинный штамм 45G37/35-K вируса ЧМЖ, адаптированный к перевиваемой культуре клеток почки сайги («Науч. осн. произ. ветер, биолог. препар.», 2005, стр.167-170) [7].

Вирусвакцины против оспы овец и чумы мелких жвачных безвредны для овец и коз, создают напряженный иммунитет на 7 и 21 сутки соответственно, продолжительностью не менее 12 месяцев. Прививная доза каждого штамма составляет не менее 1000 ТЦД50.

Раздельное применение этих вакцин не может создать иммунитет у животных одновременно против двух болезней - оспы овец и чумы мелких жвачных, а также требует удвоенного количества материальных и трудовых затрат, оказывает дополнительное стрессовое воздействие на организм животных и, как следствие, снижение продуктивности.

Цель изобретения - создание ассоциированной вакцины против оспы овец и чумы мелких жвачных животных, обладающая высокой иммуногенностью, ареактогенностью, безвредностью для овец и коз и стабильностью при хранении.

Указанная цель достигается смешиванием культуральных вакцинных вирусов оспы овец (штамм Б/5-96) и чумы мелких жвачных животных (штамм 45G37/35-К), инфекционная активность которых составляет не менее 4,75 lg ТЦД50/см3, со стабилизатором со следующим содержанием компонентов в вакцине (об.%): культуральный вирус оспы овец - 22,0-27,0; чумы мелких жвачных животных - 22,0-27,0; лактозо-пептонный либо ГЛА-сахарозо-желатиновый стабилизатор - 40,0-44,0, дистиллированная вода - остальное.

Вируссодержащий культуральный материал объединяют с лактозо-пептонным либо с ГЛА-сахарозо-желатиновым стабилизатором и лиофилизируют. Инфекционная активность каждого вируса в лиофилизированной ассоциированной вакцине составляет не менее 4,5 lg ТЦД50/см3, что соответствует 30 прививным дозам. В одной прививной дозе содержится не менее 3,0 lg ТЦД50/см3 вакцинного штамма каждого вируса. Расчет количества прививных доз проводят по вирусу, имеющего в ассоциированной вакцине наименьшую биологическую активность.

Предлагаемая ассоциированная вакцина создает иммунитет у однократно привитых овец и коз на 21 сутки одновременно против оспы овец и чумы мелких жвачных, при этом по иммуногенности она аналогична моновакцинам, применяемым против этих болезней, и стабильна при хранении.

Примеры конкретного выполнения

Пример 1.

К 22,0 мл культурального вируса оспы овец штамм Б/5-96 с активностью 4,75 lg ТЦД50/см3 добавляют 22,0 мл культурального вируса чумы жвачных штамм 45G37/35-K с активностью 5,0 lg ТЦД50/см3 и 40,0 мл лактозо-пептонного стабилизатора (лактоза - 4,0%, пептон - 20,0%) и 16,0 мл дистиллированной воды.

Смесь перемешивают, фасуют в ампулы по 1,0 мл и лиофилизируют до содержания массовой доли влаги в пределах 2,0-4,0%. Отпайку ампул проводят под вакуумом.

Пример 2.

К 27,0 мл культурального вируса оспы овец штамм Б/5-96 с активностью 4,75 lg ТЦД50/см3 добавляют 27,0 мл культурального вируса чумы жвачных штамм 45G37/35-K с активностью 5,0 lg ТЦД50/см3 и 44,0 мл ГЛА-сахарозо-желатинового стабилизатора (сахароза - 10,0%, желатин - 2,0%) и 2,0 мл дистиллированной воды.

Смесь перемешивают, фасуют в ампулы по 1,0 мл и лиофилизируют до содержания массовой доли влаги в пределах 2,0-4,0%.

Биологические свойства и физико-химические показатели приготовленной таким образом 3-х серий ассоциированной вакцины представлены в табл.1.

Таблица 1
Биологические и физико-химические показатели ассоциированной вакцины
Характеристика вакцины	Результаты определения биологических и физико-химических свойств вакцины по сериям
Серия №1	Серия №2	Серия №3
Титр вируса OO, lg ТЦД50/см3	4,5	4,5	4,66
Титр вируса ЧМЖ, lg ТЦД50/см3	4,83	4,75	4,75
Массовая доля влаги, %	2,7	3,2	3,0
Количество доз в 1,0 см3	30	30	45
Цвет и форма таблетки	Гомогенная таблетка светло-коричневого цвета	Гомогенная таблетка светло-коричневого цвета	Гомогенная таблетка светло-желтого цвета

Лиофилизированная вакцина представляет собой гомогенную пористую таблетку от светло-желтого до светло-коричневого цвета с массовой долей влаги от 2,7 до 3,2%. Титр вакцинного вируса оспы овец и чумы мелких жвачных составляет 4,5-4,75 lg ТЦД50/см3 и 4,75-4,83 lg ТЦД50/см3 соответственно.

В 1,0 см3 (ампуле) ассоциированного препарата содержится от 30 (серия №1 и №2) до 45 (серия №3) прививных доз вакцины.

Пример 3.

В экспериментах на овцах показано, что ассоциированная вакцина по иммуногенности отвечает требованиям МЭБ к моновакцинам против оспы овец и чумы мелких жвачных животных. Иммуногенность вакцины оценивали по результатам контрольного заражения овец вирулентным вирусом ОО штамм «Монгольский» и по уровню ВН-антител к вирусам ЧМЖЖ и ОО.

Результаты проверки иммуногенности ассоциированной вакцины серия 1 приведены в табл.2.

Таблица 2
Иммуногенность ассоциированной и моновакцин против оспы овец и чумы мелких жвачных животных
Группа и кол-воживотных	Кол-во доз вак-ны	Температурная реакция на прививку (°С)	Титр ВН-антител (14-21 сут)	Реакция на контрольное заражение
длит. темп. р-ии (сут)	макс. темп. (°С)	вирус OO	вирус ЧМЖЖ
Вирусвакцина против оспы овец сухая культуральная. ТУ 9384-014-00495549-98
I (2 гол.)	1 ПВД	-	-	1:2-1:4	-	Отсутствует
Вирусвакцина против чумы мелких жвачных животных сухая культуральная. ТУ 9384-06-00495549-04
II (2 гол.)	1 ПВД	1	40.3 (5 сут)	-	1:16-1:64	Отсутствует
Ассоциированная вакцина против оспы и чумы мелких жвачных животных
III (4 гол.)	1 ПВД	2	40.4	1:2-1:4	1:32-1:128	Отсутствует
IV (2 гол.)	10 ПВД	3	40.6	1:4-1:8	1:64	На 4-6 сут у одного ягненка подъем t° тела до 40,5°С
V (2 гол.)	Контроль					Угнетение, анарексия, папулезно-пустулезные поражения на коже, кератит, t° на 4-12 сут до 41,6°С

Таким образом, испытуемая серия вакцины отвечала требованиям МЭБ, предъявляемым к монопрепаратам против этих болезней, индуцировала образование в защитных титрах ВН-антител к BOO и ВЧМЖ (1:64-128) и предохраняла животных от заражения вирулентным BOO штамм «Монгольский». Вакцина безвредна для овец в 10-кратной прививной дозе.

Пример 3.

В течение 12 месяцев хранения была изучена сохраняемость ассоциированной вакцины при различных температурных режимах. Результаты этих опытов приведены в табл.3.

Таблица 3
Инфекционная активность штаммов в составе вакцины при различных температурных режимах хранения
Серия вакцины	Вакцинный вирус	Исходный титр, lg ТЦД50/см3	Температура хранения (°С)	Активность при хранении
3 мес	6 мес	12 мес
1	OO	4,5	4,0±4,0	4,5	4,5	4,5
	20,0±2,0	4,5	4,25	3,75
	ЧМЖЖ	4,83	4,0±4,0	4,83	4,83	4,83
20,0±2,0	4,75	4,5	4,0
2	OO	4,5	4,0±4,0	4,5	4,5	4,5
	20,0±2,0	4,5	3,75	3,75
	ЧМЖЖ	4,75	4,0±4,0	4,75	4,75	4,75
20,0±2,0	4,5	4,0	3,5

Как видно из табл.3, при рекомендуемой температуре хранения (4,0±4,0)°С вакцина, штаммы вируса оспы овец и чумы мелких жвачных животных сохраняют исходную активность в течение 12 мес. В то же время при хранении вакцины при (20,0±2,0)°С уже через 3 мес наблюдалось снижение ее активности.

Иммунобиологические свойства вакцины подтверждены во внутриинститутских комиссионных испытаниях.

Источники информации

1. Fassi - Fehri M Etude experimentale de 1 immunitete anticlavelense post-vaccinale / Ann. Rech. Vet. 1984, v.15, №1, p.59-64.

2. Jadhan К. M., Pandey A.K., Radatin N.S. Field observation on sheep pox tissue culture vaccine. / Indian vet. J. 1989, v.66, №10, p.908-912.

3. Иванющенков В.Н., Кореба О.В., Кекух В.Г., Уфимцева Т.Н., Уфимцев К.П., Зайцев В.А., Курченко Ф.П. Биологические свойства вакцинного штамма НИСХИ вируса оспы овец / Ветеринария, 1990, №8, с.22-24.

4. Диев В.И. Оспа овец и ее профилактика вакциной из штамма ВНИИЗЖ / Современные аспекты патологии животных: докл. конф., посвящ. 40-лет. ВНИИЗЖ. - Владимир, 1988, с.111-124.

5. Балышев В.М. и др. Вирусвакцина против оспы овец сухая культуральная, результаты разработки и производственных испытаний / Диагностика, профилактика и меры борьбы с особо опасными, экзотическими и зооантропонозными болезнями животных. Сб. ст.: Материалы Международной науч.-практ. конф., посвященной 75-летию со дня рождения И.А.Бакулова / ГНУ ВНИИВВиМ. - Покров, 2000, с.131-133.

6. Патент РФ №2284193 от 27.09.2006 г., авторы: Курченко Ф.П., Евсеев A.M., Балышев В.М., Жестерев В.И., Горшкова Т.Ф., Калантаенко Ю.Ф., Луницин А.В., Уфимцев К.П., Михалкин И.П.

7. В.М. Балышев, Михалкин И.П., Т.Ф. Горшкова, А.Н. Жуков, Ф.А. Бадаев. Изучение иммунобиологических свойств аттенуированного штамма «45G37/36-K вируса чумы мелких жвачных, выращенных в перевиваемой культуре клеток почки сайги / Науч. основы произ. ветер.биолог.преп.: матер. Международной науч.-практ. конф., посвященной 35-летию ин-та. Щелково, 2005, с.167-170.

Ассоциированная вакцина против оспы овец и чумы мелких жвачных животных, отличающаяся тем, что она содержит суспензию культуральных вакцинных штаммов Б/5-96 вируса оспы овец и 45G37/35-K вируса чумы мелких жвачных животных с активностью не менее 4,5 lg ТЦД50/см3, лактозо-пептонный или сахарозо-желатиновый стабилизатор и деминерализованную воду при следующем содержании компонентов, об.%:

вакцинный штамм Б/5-96 вируса оспы овец	22,0-27,0
вакцинный штамм 45G37/35-K вируса чумы
мелких жвачных животных	22,0-27,0
лактозо-пептонный или сахарозо-желатиновый
стабилизатор	40,0-44,0
деминерализованная вода	остальное

www.findpatent.ru

Чем опасна чума мелких жвачных животных

24.03.2016

Согласно официальной информации об эпизоотической ситуации по чуме мелких жвачных животных (ЧМЖ) на территории Грузии 12 января 2016 года впервые выявлена вспышка ЧМЖ. В ответ на вспышку приняты меры по ограничению перемещения внутри страны, проведению дезинфекции, карантина, частичного уничтожения, вакцинации. Сложившаяся ситуация создает реальную угрозу заноса возбудителя чумы мелкого рогатого скота на территорию РФ при свободном выпасе и выгульном содержании восприимчивых животных (овцы и козы) к этому заболеванию на территории субъектов РФ, а также при ввозе в Россию животноводческой продукции из Республики Грузия и Китая. Чума мелких жвачных животных является одним из самых опасных и высококонтагиозных заболеваний животных, распространения, которого приводит к масштабному экономическому ущербу, снижению инвестиционной привлекательности отрасли АПК и экспортного потенциала страны. В естественных условиях болезнь поражает коз и овец всех возрастов, но тяжелее протекает у 2-18 месячного молодняка. Козы более восприимчивы, чем овцы. Возбудитель болезни — РНК-содержащий вирус семейства Paramyxoviridae, рода Morbillivirus. Вирус ЧМЖ имеет близкое антигенное родство с вирусом ЧКРС. К ЧМЖ восприимчивы домашние, а также дикие козы и овцы, сайгаки, и некоторые другие животные. Вирус передается аэрогенным и алиментарным путем, при прямом контакте овец и коз и больными животными, а также через инфицированный корм, воду, подстилку, инвентарь, одежду обслуживающего персонала. Инфекция чаще возникает после завоза животных из неблагополучных по чуме хозяйств. Протекает в виде энзоотии, чаще проявляется в сезон дождей. У овец нередко наблюдается осложнение болезни бактериальной инфекцией и паразитарной инвазией. У коз такие осложнения бывают при хроническом течении болезни. Чума мелкого рогатого скота обостряет латентные формы пироплазмоза, тейлериоза, анаплазмоза, трипаносомоза, кокцидиоза. Инкубационный период при ЧМЖ составляет 6-15 дней. Течение болезни при сверхострой форме у коз наблюдается с повышением температуры тела до 40-42 градусов, угнетение, отсутствие аппетита, истечение из носа, слезотечение, чихание, диарею. Продолжительность болезни — 4-5 дней. У большинства больных смерть наступает внезапно. При остром течении и животных наблюдаются те же признаки, однако болезнь длится дольше, появляется кашель, на слизистой оболочке ротовой полости развиваются язвы, очаги некроза. При подостром течении отмечают лихорадку, некроз и язвы вокруг ноздрей, ротовой полости, при осложненных формах — пневмонию, диарею, истощение и обезвоживание организма, парезы и параличи конечностей. В тяжелых случаях больные животные погибают через 2-3 недели. Вирус вызывает разрушение эпителия дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта и лимфоидных органов. Диагноз ставят комплексно на основании клинических, патологоанатомических, эпизоотологических данных и результатов лабораторных исследований. При первичном появлении чумы в ранее благополучных зонах проводят уничтожение всего восприимчивого поголовья. Россельхознадзор информирует, что основой профилактики ЧМЖ является недопущение заноса возбудителя болезни из неблагополучных стран с инфицированными животными. Ввоз животных осуществляется только после согласования (разрешения) государственной ветеринарной службы субъекта, необходимо проводить тщательное клиническое наблюдение ввозимых животных, тщательно проводить дезинфекцию транспорта, пребывающего из неблагополучных стран или проходящего транзитом (особенно перевозящих скот). Для специфической профилактики ЧМЖ в настоящее время используются эффективные вакцинные препараты, в том числе вакцина, разработанная в ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии. Меры борьбы с ЧМЖ: 1. Всех больных и подозрительных по заболеванию животных необходимо перевести в отдельное помещение, организовать отдельное кормление и водопой; 2. Для ухода за больными животными выделить постоянного работника, обеспечить его спецодеждой, резиновой обувью, возможностью для обработки рук (умывальниками с теплой водой, полотенцами, мылом и дезраствором), запретить этому работнику входить в помещения, где находятся условно здоровые животные; 3. Трупы животных следует сложить в отдельном помещении и сохранить до прибытия ветеринарных специалистов. Необходимо также предотвратить проникновение в это помещение собак, кошек и диких хищников; 4. Провести дезинфекцию помещений, где находились больные и павшие животные, горячим (70-800С) 2%-ным раствором едкого натра или другим раствором дезсредств, на входах в помещения установить дезковрики; 5. Выделить остальных условно здоровых коз или овец в отдельную неблагополучную группу и, независимо от времени года, перевести в условия изолированного стойлового содержания, не допуская перемещения животных ни в пределах хозяйства, ни за его пределы; 6. Запретить выезд из хозяйства и въезд в него всех видов транспорта, выход и вход людей без соответствующей дезобработки, а также вывоз с территории хозяйства продуктов и сырья животного происхождения, кормов и других грузов. Обязательно обо всех случаях заболевания животного сообщать в ближайшую государственную ветеринарную службу.

rsn-rostov.ru

Сухая культуральная вирусвакцина против чумы мелких жвачных животных

Изобретение относится к области ветеринарии. Целью изобретения является сухая культуральная вирусвакцина против чумы мелких жвачных животных, обладающая высокой иммуногенностью, безвредностью, ареактогенностью для овец и коз и низкой себестоимостью. Вирусвакцина включает лиофилизированный вируссодержащий материал, полученный на основе штамма "45G37/35-K" и защитную среду в объемном соотношении 1:1. В качестве защитной среды вирусвакцина содержит среду следующего состава, мас.%: ферментативный пептон - 9,8-10,2; лактоза - 1,8-2,2; дистиллированная вода - остальное. Вакцина безвредна, высокоиммуногенна, стабильна при хранении. 1 з.п. ф-лы.

Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к разработке вирусвакцины, предназначенной для специфической профилактики чумы мелких жвачных животных.

В неблагополучных по чуме мелких жвачных животных странах для специфической профилактики болезни применяют вирусвакцины, полученные на основе аттенуированных штаммов вирусов чумы мелких жвачных животных (ЧМЖЖ) и чумы крупного рогатого скота (ЧКРС), которые имеют между собой антигенное родство и генетическое сходство [4, 7, 8, 9, 10].

Имеются также сообщения о разработке инактивированных и рекомбинантных вакцин, которые, однако, не нашли широкого применения в ветеринарной практике [1, 2].

Гетерологичные вакцины, полученные на основе вакцинного вируса ЧКРС, защищают овец и коз от клинического проявления ЧМЖЖ, но не предотвращают размножение в организме вирулентного вируса. В связи с этим авторы не рекомендуют использовать такие препараты для вакцинации мелких жвачных животных [3, 6].

Для специфической профилактики болезни в неблагополучных зонах широко применяют вирусвакцины, которые получают на основе аттенуированного штамма "Nigeria 75/1" вируса ЧМЖЖ и его вариантов [2, 5, 10].

Неблагоприятная эпизоотическая ситуация по ЧМЖЖ в 1990-2003 гг.на территории ряда государств (Индия, Турция, Иран, Ирак, Израиль и др.), имеющих торгово-экономические связи с Россией, и отсутствие в стране вакцины против этой болезни указывали на необходимость разработки средств специфической профилактики против чумы мелких жвачных животных.

Наиболее близкой к предлагаемому изобретению (прототип) является вирусвакцина из штамма "75/1 LK6 ВК2 Vero70", создающая напряженный иммунитет у животных через 21 день после прививки длительностью более одного года [10]. Однако недостатком указанной вирусвакцины является то, что вакцинный вирус культивируют в перевиваемой культуре клеток VERO, которую выращивают на питательной среде Игла MEM с фетальной сывороткой теленка, имеющей высокую стоимость.

Целью изобретения является сухая культуральная вирусвакцина против чумы мелких жвачных животных, обладающая высокой иммуногенностью, безвредностью, ареактогенностью для овец и коз и низкой себестоимостью.

Поставленная цель достигается использованием при конструировании вирусвакцины нового вакцинного штамма "45G37/35-К" вируса ЧМЖЖ, выращенного в первичной культуре клеток почки или тестикул ягненка на питательной среде культивирования Игла MEM или ГЛА с сывороткой крови КРС.Ее используют вместо фетальной сыворотки теленка, которая не производится в России и странах СНГ, это значительно снижает себестоимость вакцины.

Вакцинный штамм селекционирован пассированием аттенуированого штамма "45g" в первичных культурах клеток почки и тестикул ягненка и перевиваемой - почки сайги. Штамм безвреден и ареактогенен для овец и коз, обладает высокой иммуногенностью и накапливается в этих культурах клеток в титре 5,0-6,0 lg ТЦД50/см3. Указанный штамм депонирован 14.12.04 г. в качестве производственного в Государственной коллекции штаммов микроорганизмов ФГУ Всероссийского государственного центра качества и стандартизации лекарственных средств и кормов (ФГУ ВГНКИ), имеет регистрационый шифр "45G37/35-K".

Сухая культуральная вирусвакцина против чумы мелких жвачных животных, включающая вируссодержащий культуральный материал из аттенуированного штамма вируса чумы мелких жвачных животных и защитную среду, при этом в качестве вируссодержащего культурального материала вакцина содержит вируссодержащий культуральный материал аттенуированного штамма "45G37/35-К" с титром инфекционной активности 5,0-6,0 lg ТЦД50/см3 и защитную среду при содержании компонентов 1:1. В качестве защитной среды она содержит среду следующего состава, мас.%: ферментативный пептон 9,8-10,2; лактоза 1,8-2,2; дистиллированная вода - остальное.

Авторами разработаны требования к сухой культуральной вирусвакцине против чумы мелких жвачных животных, которые включают следующие характеристики: титр вакцинного вируса в сухом препарате составляет не менее 4,5 lg ТЦД50/см3; прививная доза вакцины - не менее 1000 ТЦД50; длительность иммунитета - не менее 12 месяцев; срок хранения вакцины при температуре 4±4°С и -40±1°С и ниже - 12 и 24 месяцев соответственно; остаточная влажность 1-4%; в ампулах (флаконах) с вакциной должен быть вакуум.

В примерах конкретного исполнения приведены сведения по изготовлению 2-х опытных серий вирусвакцины и их физико-химические и иммунобиологические характеристики.

Пример 1. Изготовление вирусвакцины

Для приготовления двух серий вирусвакцины используют вируссодержащее сырье, полученное в стационарном монослое первичной культуры клеток почки ягненка на основе штамма "45G37/35-K". Культуру клеток выращивают в питательной среде Игла MEM с 10% сыворотки КРС. Через 72 часа матрасы с культурой клеток (по 10 матрасов на каждую серию вакцины) заражают вирусом в дозе 0,01 ТЦД50/кл и культивируют в течение 7 суток до появления характерного цитопатогенного действия. Через 3-е суток культивирования проводят смену поддерживающей питательной среды. Активность полученного культурального вируса серии 1 составляет 5,7 lg ТЦД50/см3 серии 2-5,5 lg ТЦД50/см3.

Каждую серию вируссодержащего культурального материала (1000 мл) объединяют с таким же количеством (1000 мл) защитной среды, содержащей (мас.%): ферментативного пептона - 10; лактозы - 2; дистиллированной воды - остальное.

Приготовленную технологическую жидкость тщательно перемешивают и расфасовывают в ампулы по 1 см3. Сушку вакцины проводят на сублимационном аппарате ТГ-50, предварительно заморозив смесь до -50°С. Время сушки вакцины серий 1 и 2 составляет 34 и 37 часов соответственно, ампулы с вакциной подвергают вакуумной обработке. Остаточная влажность в вакцине серии №1 и №2 составила 3,0 и 3,2% соответственно. Рост бактериальной и грибной микрофлоры в вакцине не выявлен.

Пример 2. Контроль биологических показателей вакцины.

Полученные серии вирусвакцины изучают по следующим показателям: биологическая активность, безвредность и иммуногенная активность.

Биологическая активность

Титрование вирусвакцины проводят в монослойной пробирочной культуре клеток почки сайги в 3-х повторностях по общепринятой методике. Активность вирусвакцины серии №1 составляла 5,25 ТЦД50/см3, серии №2-5,0 lg ТЦД50/см3.

Безвредность

Безвредность каждой серии вирусвакцины изучают на 2-х ягнятах трехмесячного возраста, которым вводят подкожно с внутренней поверхности бедра неразведенную вакцину в объеме 1,0 см3. Все животные оставались клинически здоровыми в течение 21 суток наблюдения.

Иммуногенная активность

Иммуногенную активность вакцины определяют на овцах и кроликах (по 3 головы на каждую серию) по уровню накопления ВН-антител через 14 суток после прививки и по результатам контрольного заражения овец. У привитых вирусвакциной в дозе 1000 ТЦД50 овец не наблюдали повышения температуры тела и признаков болезни, т.е. штамм не был реактогенным. В указанные сроки титр ВН-антител в сыворотках крови животных составил 1:8-1:16.

Привитые овцы не заболели после заражения вирулентным вирусом в дозе 1000 ИД50, тогда как контрольные животные (2 головы) заболели чумой мелких жвачных с проявлением характерных клинических признаков болезни на 5-10 сутки после инфицирования.

Пример 3. Изучение стабильности физико-химических свойств и биологической активности вакцины при хранении.

Сохраняемость сухой вирусвакцины серий №1 и №2 изучают в течение 12 и 24 месяцев хранения при температурах 4±4°С и -40±1°С соответственно. Через указанное время вакцина сохраняла исходную активность, которая для серий №1 и №2 составляла 5,25 lg ТЦД50/см3 и 5,0 lg ТЦД50/см3 соответственно.

Остаточная влажность оставалась на исходном уровне в вакцине серии №1 - 3,0%, серии №2 - 3,2%, в ампулах сохранялся вакуум.

Таким образом, по иммунобиологическим и физико-химическим показателям испытуемые серии вирусвакцины против чумы мелких жвачных животных соответствовали разработанным требованиям.

Сухая культуральная вирусвакцина против чумы мелких жвачных с положительным результатом прошла межведомственные комиссионные испытания (с участием ФГУ ВГНКИ) и признана безвредным, высокоиммуногенным и стабильным при хранении препаратом.

Источники информации

1. Abegunde A., Ada F.D. // Bull Anim. Hith. Prod. In Africa, 1977, Vol 25, 3.

2. Berhe G. et al. // Journal of Virology, 2003, Vol.77, 2.

3. Burdin P. // Rev. Elev. Med. Vet. Paes. Trop, 1973, Vol.26, 3.

4. Diallo. A. // Dev Biol (Basel), 2003,114:113-9.

5. Diallo A. et al. // Rev. Elev. Med. Vet. Pays. Trop, 1989, Vol.42.

6. Gibbs E. P. J. et al. Intervirology, 1979, 11.

7. M.H.V. van Regenmortel et al. // Academic Press, 2000, San Diego.

8. Sarkar J. et al. // Vaccine, 2003, Dec 1;21(32).

9. Wosu L.O.I I Studies Res. Vet. Med., 1994, Vol.2

10. Manual of standards for diagnostic tests and vaccines: list A and В discases of mammals, birds and bees. Office International des Epizooties (OIE) world organisation for Animal health. 2000. P. 114-122.

1. Сухая культуральная вирусвакцина против чумы мелких жвачных животных, включающая вируссодержащий культуральный материал из аттенуированного штамма вируса чумы мелких жвачных и защитную среду, отличающаяся тем, что в качестве вируссодержащего культурального материала вакцина содержит вируссодержащий культуральный материал аттенуированного штамма "45G37/35-K" с титром инфекционной активности 5,0-6,0 lg ТЦД50/см3 и защитную среду при содержании компонентов 1:1.

2. Сухая культуральная вирусвакцина по п.1, отличающаяся тем, что она содержит защитную среду следующего состава, мас.%:

Ферментативный пептон	9,8-10,2
Лактоза	1,8-2,2
Дистиллированная вода	остальное

www.findpatent.ru

Чума крупного рогатого скота

Чума крупного рогатого скота — остропротекающая контагиозная болезнь, характеризующаяся высокой лихорадкой, катарально-геморагическим и крупоз- но-дифтерическим воспалением слизистых оболочек и гибелью до 90—100% животных. В естественных условиях к вирусу чувствительны крупный рогатый скот, зебу и буйволы. Дикие жвачные животные болеют в легкой форме и распространяют болезнь на огромные пространства. Домашние свиньи могут проявлять признаки болезни и являются важным резервуаром вируса в Азии. Из диких животных восприимчивы олени, антилопы и гиппопотамы. Чума крупного рогатого скота продолжает оставаться бедствием для многих стран Африки и тропической Азии. Вирус размножается в лимфоузлах, а после развития виремии, длящейся 2—3 дня, обнаруживается в лимфоузлах, селезенке, костном мозге, дыхательных и пищеварительных органах. В результате размножения вируса и разрушения клеток в лимфоидных органах развивается лейкопения и иммунодефицит. Антигенная вариабельность у вируса чумы крупного рогатого скота не установлена. Все его штаммы иммунологически идентичны. Животные-реконвалесценты приобретают пожизненный иммунитет. ВНА появляются через 6—7 дней и достигают максимума через 3—4 недели после инфицирования. Вирус чумы крупного рогатого скота имеет выраженную антигенную активность и индуцирует синтез нейтрализующих, комплементсвязываю- щих, преципитирующих и подавляющих гемагглютинацию антител. Колост- ральный иммунитет у телят от коров, иммунизированных активно или вследствие переболевания, сохраняется 6-8 мес. Поскольку колостральные антитела тормозят образование иммунитета, телят нельзя вакцинировать раньше этого срока [1276]. Вирус чумы крупного рогатого скота имеет близкое антигенное родство с вирусами чумы мелкого рогатого скота, чумы плотоядных и кори. Вакцину против чумы крупного рогатого скота можно использовать для иммунизации овец и коз, которые могут иметь субклиническую инфекцию. Сыворотка против вируса чумы плотоядных или против кори человека нейтрализует in vitro вирус чумы крупного рогатого скота, а сыворотка против вируса чумы крупного рогатого скота нейтрализует вирусы чумы плотоядных и кори. Однако иммунизация крупного рогатого скота против чумы дает эффект только при введении высоких доз вируса чумы плотоядных и не дает результатов при введении вируса кори. Гемагглютинирующий антиген у вируса чумы крупного рогатого скота выявляют только после специальной обработки. Антисыворотка к вирусу чумы крупного рогатого скота нейтрализует гемагглютинирующую активность вируса кори. Для специфической профилактики ЧКРС в настоящее время используют живые культуральные вакцины, которые по безопасности и иммуногенности отвечают современным требованиям. Вакцины против ЧКРС являются одними из наиболее эффективных вирусных вакцин. Три типа аттенуированных вакцин использовали для ликвидации ЧКРС: лапинизированную, капринизированную и культуральную. Лапинизиро- ванную вакцину размножали на кроликах — штамм Накамура-III. Затем его адаптировали к куриным эмбрионам [1144]. Лапинизированно-авинизирован- ную (LA) вакцину в основном применяли в Азии. Капринизированная вакцина из штамма Муктесвар была первой вакциной против ЧКРС и использовалась до недавнего времени в Индии. В странах стационарно неблагополучных по ЧКРС наиболее широко используют культуральную вакцину RBOK из аттенуированного штамма Kabete «О» с помощью многочисленных пассажей (90—100 пассажей в культуре клеток почки телят). Данная вакцина безопасна и эффективна, обеспечивает полную защиту от чумы КРС при однократном введении [ 1249]. Эта вакцина не передается при контакте, создает напряженный иммунитет длительностью не менее 10 лет [1252]. Кампания массовой вакцинации в течение 1 месяца позволила создать 90%-ный уровень иммунитета у 70-90% животных всех возрастов. При сравнительном анализе нуклеотидной последовательности геномов вакцинного штамма RBOK и вирулентного изолята вируса чумы КРС выявлено 87 замен, расположенных в областях кодирующих белки, а также в нетранслируемых участках, которые являются значимыми в проявлении вирулентных свойств. С целью снижения возможной спонтанной контаминации вакцины RBOK вирусами КРС для размножения вакцинного вируса используют перевиваемую линию клеток Vero (не пермиссивную для вируса диареи КРС). Отрицательным качеством вакцины является ее термолабильность. Она может длительно храниться лишь при —20°С. Используя более совершенную лиофилизационную технику и среду высушивания, удалось получить термостабильную вакцину [1008], которая оставалась активной в течение месяца при 37°С [1009]. После однократной прививки (100 ИД100) иммунитет наступает через 72 часа. Быстрый защитный эффект после вакцинации обеспечивается за счет интерференции, поскольку нейтрализующие антитела проявляются через семь дней и достигают максимума через три недели. У вакцинированных животных, в отличие от больных, в органах не выявляют преципитирующего антигена, что дает возможность дифференцировать вакцинированных от больных животных. Сувеличением дозы вакцины в 100 раз титр ВНА у крупного рогатого скота повышался всего в 5 раз. Прививка в дозе 100 ИД100 вызывала образование ВНА у всех животных, титр которых сохранялся на максимальном уровне в течение 64 мес., что соответствовало также продолжительности напряженного иммунитета. У крупного рогатого скота зараженного через 7 дней после вакцинации, не отмечено клинических признаков заболевания, не обнаружен вирус в крови и не отмечена его экскреция во внешнюю среду. Однако у некоторых животных отмечено выраженное повышение титра специфических антител [1250]. Определяющее значение в борьбе с чумой КРС придается вакцинации. Обычно считается, вакцинация не менее 90% популяции скота прекращает заболевание. Однако наиболее эффективной будет 100%-ная иммунизация скота с учетом продолжительности колострального иммунитета у телят (3—8 мес.). Рекомбинантные векторные вакцины были созданы путем вставки Н и/или F генов вируса ЧКРС в вирус осповакцины в качестве вектора [1590, 1696]. Лио- филизированная рекомбинантная вакцина (RRV), так же как сухая осповакци- на, сохраняла активность 1 месяц при 45°С, а после восстановления (растворения) — 1 неделю при 37°С или 1 день при 45°С [1696]. RRV вакцина не вызывала реакции у привитых животных и не передавалась контактно КРС при совместном содержании в течение года. Привитые животные были полностью защищены от заболевания и гибели при экспериментальном заражении. RRV (рекомбинантный вирус) обладал генетической стабильностью в течение 5 пассажей на КРС. Вставка Н гена вируса ЧКРС в область гена гемагглютинина вируса осповакцины вызвала его инсерционную инактивацию. Эта потеря ГА стала своеобразным фенотипическим маркером рекомбинантного вируса RRV [1696]. Рекомбинантный вирус с аналогичными свойствами (CPV) получен при использовании вируса оспы канареек в качестве вектора.

www.med24info.com