5 вопросов о прививке — Голос

Полтора года назад коронавирус напугал всех без исключения. Кто-то проявлял тревогу больше, кто-то меньше, но почти все вопрошали: «Нас спасут? Нам придумают средство от этой заразы?!» И ждали. И надеялись. Особенно когда умирали любимые, близкие, дорогие люди. Дождались — антиковидная вакцина есть. Казалось бы, прививайся на здоровье. Ан нет, многим мешает то ли нерешительность, то ли дух протеста, а может, и банальная неосведомленность. «Голос Череповца» пообщался с ведущими медиками города, которые ответили на некоторые часто задаваемые вопросы горожан.

1. Есть ли смысл делать тест на антитела перед вакцинацией?

— Основное значение выявления антител — это оценка иммунного ответа на текущую или перенесенную инфекцию, — говорит врач общей практики

поликлиники № 7 Татьяна Тяпайкина, заместитель главного врача по лечебной части. — Решение о необходимости проведения теста принимается

лечащим врачом индивидуально, исходя из клинической целесообразности.

Чтобы выявить уровень иммуноглобулинов к ковиду, необходимо использовать наборы реагентов для количественного определения антител. А результаты исследований представлять с использованием условных единиц измерения, принятых Всемирной организацией здравоохранения в качестве международного стандарта.

— Вместе с тем, согласно документу «Порядок проведения вакцинации взрослого населения против COVID-19», которым мы руководствуемся,

прививку рекомендуется проводить без тестирования на антитела, — отмечает Татьяна Александровна. — В настоящий момент не существует утвержденного маркера, то есть какого-то определенного защитного уровня антител. Работы по выработке такого параметра находятся в стадии исследований и пока не приняты, в том числе ВОЗ.

Врач поясняет, что имеющиеся тест-системы для определения клеточного иммунитета не могут использоваться в широком обороте из-за отсутствия достоверных данных по интерпретации результатов исследования (длительность защиты, ее выраженность и степень устойчивости иммунной системы к ответу на мутации вируса).

— Кроме того, для детекции, то есть выявления уровня клеточного иммунитета, необходимо проводить тесты сразу после забора крови и только в течение короткого, порядка 30 дней, интервала после вакцинации или перенесенной инфекции. Учитывая эти факторы и рекомендации ВОЗ, важно своевременно вакцинироваться вне зависимости от наличия и количества антител IgG.

Как отмечает Татьяна Александровна, из-за того, что утвержденный маркер (определенный защитный уровень антител) отсутствует, интерпретация полученных результатов исследования на иммуноглобулины к коронавирусу затруднена.

— Есть и еще один момент: если неизвестна давность перенесенного заболевания, целесообразность исследования напряженности гуморального иммунитета, то есть проведения теста на наличие антител, сомнительна.

2. Зачем носить маску после прививки?

— Согласно рекомендациям ВОЗ вакцина против COVID-19 защищает человека от серьезного заболевания и смерти, до сих пор не известно до конца, в какой степени она предохраняет от заражения вирусом и предотвращает его передачу другим людям, — говорит Татьяна Тяпайкина. — То есть прививка гарантирует, что у человека не будет тяжелых осложнений и что он не умрет от коронавирусной инфекции. Но можно быть носителем вируса. Чтобы защитить других и себя, необходимо соблюдать санитарные меры, среди которых и значится ношение масок.

3. Почему аутоиммунные заболевания не внесены в список противопоказаний для прививки?

— Существует крайне мало строгих противопоказаний к проведению вакцинации, — отвечает Людмила Дубовенко, начальник отдела организации медицинской помощи по Череповцу. — И аутоиммунные заболевания к ним не относятся, так же как и онкология, сахарный диабет, ВИЧ-инфекция и другие. Более того, среди пациентов с сахарным диабетом доля смертности от COVID-19 высока, поэтому им особенно показана вакцинация, и врачи едины в этом мнении.

Аутоиммунное заболевание не является противопоказанием для прививки, если:

* болезнь находится в стадии компенсации (организм способен самостоятельно возместить ущерб, нанесенный патологией; эта форма характеризуется тем, что больной не чувствует особых изменений своего состояния),

* болезнь находится в стадии субкомпенсации (частичное расстройство компенсаторного механизма; во время этой стадии клинические симптомы постепенно нарастают).

— В инструкциях к препаратам для вакцинации также указано, что с заболеванием в этих стадиях прививаться можно, — уверяет начальник отдела.

4. Можно ли делать прививку аллергикам и «сердечникам»?

— Этим категориям пациентов прививка не противопоказана. Есть лишь единичные случаи, когда страдающим аллергией нельзя вакцинироваться, — говорит Людмила Дубовенко. — Например, когда состояние сопровождается сложным поражением кожи или когда человек лежит с бронхиальным статусом, то есть задыхается. В отношении пациентов с сердечно-сосудистыми заболеваниями — нельзя вакцинироваться тем, кто только что перенес инфаркт. Как только выписали из стационара, сразу надо привиться. Потому что эти люди находятся в группе риска.

5. Зачем нужна повторная прививка?

— В нашем организме есть клеточный иммунитет, который сохраняет информацию об антигене вируса, — говорит врач-эпидемиолог поликлиники № 1 Марина Дутова. — Эта память позволяет организму при повторной встрече с инфекцией дать иммунный ответ быстрее, чем при первой встрече. Уровень антител максимален после только что перенесенного заболевания или после прививки. Но по прошествии времени он снижается, и в условиях пандемии необходимо поддерживать высокий уровень защитных антител, чтобы снизить риски повторного заражения.

Как объясняет Марина Александровна, притом что организм запоминает информацию о вирусе, он не держит специфическую часть иммунной системы в полной боевой готовности, если длительное время не сталкивается с соответствующим антигеном.

Инна Анохина, [email protected]

Чунга, Чанга, Хуба и Буба: в приюте для бездомных собак «Зоощит» вновь пополнение

С новым квартетом питомцев познакомились участники Городского штаба добровольцев. Волонтеры помогают приюту в сборе необходимых вещей и регулярно приходят погулять с собаками.

Волонтеров городского штаба добровольцев встречают новички приюта «Зоощит» Хуба, Буба, Чунга и Чанга. Этот милый квартет появился в приюте совсем недавно. Щенков обнаружили у одной из заводских проходных. Сегодня малышам 4,5 месяца. Как говорят в приюте, девочки вырастут длинноногими красавицами. Уже обработаны от паразитов. Скоро на прививки. А пока, новые знакомства в лице молодых и отзывчивых волонтеров.

Вероника Беляева, волонтер: «Зовут собачку Чунга, гулять одна не любит. Ей нужна компания, боится немножко. Так что, мы из-за этого на ручках выгуливаем. Сейчас подружимся, чтобы она не боялась, шла на контакт».

Ребята из городского штаба добровольцев с приютом «Зоощит» дружат давно. Приходят помогать регулярно. В основном — гуляют с собаками. Это очень важно, отмечают волонтеры. Прогулки с человеком помогают животным социализироваться. А значит, отношения с будущими хозяевами будут складываться легче. Почти у каждого добровольца в приюте есть свой любимчик. Однако сегодня все ребята решили погулять именно с новичками. И среди них не только пушистая четверка Хуба, Буба, Чунга и Чанга.

Волонтеров  встречают новички приюта «Зоощит» Хуба, Буба, Чунга и Чанга

Екатерина Матвеева, волонтер: «Вот эта новая собачка Руби. Она приехала только вчера, впервые я с ней сегодня познакомилась, погуляла. Она очень гиперактивна. Чуть меня не унесла вместе с собой. Очень любит бегать, прыгать, вообще играть».

Руби — тот самый случай, когда не волонтер выгуливает четвероного друга. А наоборот!

«Эту собачку зовут Туман. Он тут несколько месяцев. Уже один раз убегал отсюда, к сожалению. Но опять сюда вернулся. И за ним очень хорошо ухаживают. — Как у тебя с ним отношения складываются? — Пока хорошо. Не убегает от меня. Такой спокойный песик, дружелюбный». 

Молодые активисты помогают приюту в сборе необходимых вещей, оказывают информационную поддержку.

Молодые активисты помогают приюту в сборе необходимых вещей, оказывают информационную поддержку

Анна Неволина, руководитель городского штаба добровольцев: «Мы постоянно устраиваем пункты сбора, в том числе в Молодежном центре. Буквально вчера мы отвезли партию материальной помощи. Всегда нужны крупы, продукты, ветошь, картон, старые кастрюли. На самом деле, много чего пригождается в быту. Если люди хотят помочь, они могут задавать нам вопросы. Мы говорим, что актуально. Можно принести вещи к нам в Молодежный центр, мы затем централизованно их относим».

В городском штабе добровольцев состоят около 300 череповчан. Направлений работы много. Это и городские мероприятия, и помощь ветеранам, озеленение города.

«Занимаемся мы разными направлениями. Это одно из любимых. Потому что, это дарит эмоции и самим ребятам».

Знакомство с новыми питомцами, возможно, перерастет в большую дружбу

Знакомство с новыми питомцами, возможно, перерастет в большую дружбу. Хотя будет лучше, если Руби, Тумана, Хубу и Бубу, Чунгу и Чангу поскорее заберут новые хозяева, говорят волонтеры.

Испытания вакцины AstraZeneca в США прояснят путаницу в отношении того, насколько хорошо она работает: американский ученый

Джули Стинхейзен насколько эффективна экспериментальная прививка AstraZeneca после озадачивающих результатов других испытаний, опубликованных компанией и ее партнером Оксфордским университетом.

Слайд-шоу ( 2 изображения )

AstraZeneca Plc является одним из ведущих разработчиков вакцин, но промежуточные данные, опубликованные 23 ноября по результатам испытаний в Великобритании и Бразилии, показали сильно расходящиеся результаты при тестировании вакцины в двух различных комбинациях доз.

По данным компании, небольшая группа испытуемых случайно получила половинную дозу, а затем полную дозу вместо запланированных двух полных доз. В этой группе вакцина оказалась на 90% эффективнее в предотвращении болезни. Но большая группа, получившая две полные дозы, показала 62% успеха.

Хотя эффективность 62 % превышает контрольный показатель, установленный регулирующими органами для признания вакцины против COVID-19 успешной, она меркнет по сравнению с эффективностью 95 % и 94,1 %, продемонстрированной в крупных испытаниях вакцин от Pfizer Inc и Moderna Inc соответственно.

Американское исследование вакцины компании «АстраЗенека» с участием около 30 000 добровольцев находится в работе, и к концу января должны быть получены данные.

«Нам очень удобно, что мы разработали действительно хорошее испытание в Соединенных Штатах, где все получают прививку в одно и то же время, и мы знаем, какова доза», — сказал д-р Ларри Кори, один из руководителей Коронавируса США. Сеть профилактики вакцин, которая помогала разрабатывать и курировала испытания программы правительства США Operation Warp Speed.

Дозировка в британском испытании «была сделана неправильно», утверждает Кори. Тем не менее, разница в дозировке не полностью объясняет разницу в эффективности, наблюдаемую в испытаниях в Великобритании и Бразилии, сказал он.

«Одна из проблем с данными Оксфорда заключается в том, что в расписании и дозах отсутствует единообразие, что в лучшем случае затрудняет интерпретацию результатов», — сказал он в телефонном интервью.

Были также различия в интервалах между дозами в исследовании Великобритании и Бразилии, а также значительные различия в возрастном диапазоне, включенном в исследования. Например, все в 90% эффективной группы были в возрасте до 55 лет, группа менее восприимчива к тяжелой форме COVID-19.

«Мое личное заключение состоит в том, что вакцина «АстраЗенека», по результатам этого другого испытания, похоже, обладает эффективностью, что вселяет оптимизм в отношении того, что нынешнее испытание в Соединенных Штатах определит эту эффективность», — сказал он.

Монсеф Слауи, главный советник программы вакцины Operation Warp Speed, заявил на прошлой неделе, что британских и бразильских испытаний может быть недостаточно, чтобы вакцина получила разрешение на экстренное использование Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США.

Результаты и, возможно, запрос на разрешение на использование в чрезвычайных ситуациях в США от AstraZeneca могут быть получены в конце января, сказал он.

Компания AstraZeneca заявила, что рассматривает возможность проведения нового глобального исследования, основанного на первой схеме лечения половинной дозой.

Испытание в США требует тестирования оригинальной схемы двух полных доз.

Если AstraZeneca решит провести новое испытание в США для проверки первого варианта половинной дозы, сказал Кори, Соединенные Штаты вряд ли помогут оплатить счет.

«Компании сами решают, что им делать, — сказал он. «Я уверен, что им придется финансировать это самим, или, может быть, кто-то другой профинансирует это для них».

Живая аттенуированная вакцина против вируса Ласса, основанная на реаранжировке межгенной области

1. Фрейм Д.Д., Болдуин Дж.М.-младший, Гокке Д.Дж., Троуп Дж.М.
1970.
Лихорадка Ласса, новое вирусное заболевание человека из Западной Африки. I. Клиническое описание и патологические данные. Am J Trop Med Hyg
19: 670–676. doi: 10.4269/ajtmh.1970.19.670. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

2. Бакли С.М., Казальс Дж.
1970.
Лихорадка Ласса, новое вирусное заболевание человека из Западной Африки. III. Выделение и характеристика вируса. Am J Trop Med Hyg
19: 680–691. doi: 10.4269/ajtmh.1970.19.680. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Monath TP, Newhouse VF, Kemp GE, Setzer HW, Cacciapuoti A.
1974.
Выделение вируса Ласса от грызунов Mastomys natalensis во время эпидемии в Сьерра-Леоне. Наука
185: 263–265. doi: 10.1126/наука.185.4147.263. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

4. Фише-Кальве Э., Роджерс Д.Дж.
2009.
Карты риска лихорадки Ласса в Западной Африке. PLoS Negl Trop Dis
3:e388. doi: 10.1371/journal.pntd.0000388. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Гибб Р., Мозес Л.М., Реддинг Д.В., Джонс К.Е.
2017.
Понимание загадочной природы лихорадки Ласса в Западной Африке. Патог Глоб Здоровье
111: 276–288. дои: 10.1080/20477724.2017.1369643. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Буба М.И., Далхат М.М., Нгуку П.М., Вазири Н., Мохаммад Д.О., Бомои И.М., Ония А.П., Онвуджеи Дж., Балогун М.С., Башорун А.Т., Нсубуга П, Насиди А.
2018.
Смертность среди подтвержденных случаев лихорадки Ласса во время вспышки 2015–2016 гг. в Нигерии. Am J Общественное здравоохранение
108: 262–264. doi: 10.2105/AJPH.2017.304186. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Робертс Л.
2018.
В Нигерии произошла беспрецедентная вспышка лихорадки Ласса. Наука
359: 1201–1202. doi: 10.1126/science.359.6381.1201. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Анонимно.
2018.
Лихорадка Ласса и глобальная безопасность в области здравоохранения. Ланцет Infect Dis
18:357. doi: 10.1016/S1473-3099(18)30179-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Kofman A, Choi MJ, Rollin PE.
2019.
Лихорадка Ласса у путешественников из Западной Африки, 1969–2016 гг. Возникновение инфекции Dis
25:245–248. дои: 10.3201/eid2502.180836. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Bausch DG, Hadi CM, Khan SH, Lertora JJ.
2010.
Обзор литературы и предлагаемые рекомендации по применению перорального рибавирина в качестве постконтактной профилактики лихорадки Ласса. Клин заразить Dis
51:1435–1441. дои: 10.1086/657315. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Эберхардт К.А., Мишлингер Дж., Джордан С., Грогер М., Гюнтер С., Рамхартер М.
2019.
Рибавирин для лечения лихорадки Ласса: систематический обзор и метаанализ. Int J Infect Dis
87:15–20. дои: 10.1016/j.ijid.2019.07.015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Всемирная организация здравоохранения. 2018.
План исследований и разработок для предотвращения эпидемий. https://www.who.int/blueprint/en/.

13. Радошицки С.Р., Бухмайер М.Дж., Шаррел Р.Н., Клегг Дж.С., Гонсалес Дж.Дж., Гюнтер С., Хепойоки Дж., Кун Дж.Х., Лукашевич И.С., Романовский В., Сальвато М.С., Сирони М., Стенглейн М.Д., де ла Торре Дж.К.; Консорциум отчетов ICTV. 2019.
Таксономический профиль вируса ICTV: Arenaviridae . Джей Ген Вирол
100:1200–1201. дои: 10.1099/jgv.0.001280. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Лукашевич И.С., Стельмах Т.А., Голубев В.П., Щесленок Е.П., Лемешко Н.Н.
1984.
Рибонуклеиновые кислоты вирусов Мачупо и Ласса. Арк Вирол
79:189–203. doi: 10.1007/bf01310811. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Джавани М., Лукашевич И.С., Санчес А., Никол С.Т., Сальвато М.С.
1997.
Завершение последовательности вируса лихорадки Ласса и идентификация открытой рамки считывания пальца RING на 5′-конце L РНК. Вирусология
235:414–418. doi: 10.1006/viro.1997,8722. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Лукашевич И.С., Джавани М., Шапиро К., Санчес А., Равков Э., Никол С.Т., Сальвато М.С.
1997.
Ген L вируса лихорадки Ласса: нуклеотидная последовательность, сравнение и преципитация предсказанного белка массой 250 кДа моноспецифической антисывороткой. Джей Ген Вирол
78: 547–551. дои: 10.1099/0022-1317-78-3-547. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Perez M, Craven RC, de la Torre JC.
2003.
Небольшой белок Z пальца RING управляет почкованием аренавируса: последствия для антивирусных стратегий. Proc Natl Acad Sci U S A
100:12978–12983. doi: 10.1073/pnas.2133782100. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Strecker T, Eichler R, Meulen J, Weissenhorn W, Dieter Klenk H-D, Garten W, Lenz O.
2003.
Белок Z вируса Ласса является матричным белком и достаточен для высвобождения вирусоподобных частиц [исправлено]. Джей Вирол
77:10700–10705. doi: 10.1128/jvi.77.19.10700-10705.2003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Auperin DD, Sasso DR, McCormick JB.
1986 год.
Нуклеотидная последовательность гена гликопротеина и межгенная область геномной РНК вируса Ласса S. Вирусология
154: 155–167. дои: 10.1016/0042-6822(86)90438-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Clegg JCS, Wilson SM, Oram JD.
1991.
Нуклеотидная последовательность S РНК вируса Ласса (нигерийский штамм) и сравнительный анализ продуктов генов аренавирусов. Вирус Res
18:151–164. doi: 10.1016/0168-1702(91)

-N. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Hass M, Gölnitz U, Müller S, Becker-Ziaja B, Günther S.
2004.
Репликонная система для вируса Ласса. Джей Вирол
78:13793–13803. doi: 10.1128/ОВИ.78.24.13793-13803.2004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Ортис-Риано Э., Ченг Б.И., де ла Торре Х.С., Мартинес-Собридо Л.
2011.
С-концевая область нуклеопротеина вируса лимфоцитарного хориоменингита содержит отдельные и разделяемые функциональные домены, участвующие во взаимодействии NP-Z и противодействии ответу интерферона I типа. Джей Вирол
85:13038–13048. doi: 10.1128/ОВИ.05834-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Мартинес-Собридо Л., Суньига Э.И., Росарио Д., Гарсия-Састре А., де ла Торре Х.К.
2006.
Ингибирование интерферонового ответа типа I нуклеопротеином прототипа аренавируса лимфоцитарного вируса хориоменингита. Джей Вирол
80:9192–9199. doi: 10.1128/ОВИ.00555-06. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Rodrigo WW, Ortiz-Riaño E, Pythoud C, Kunz S, de la Torre JC, Martinez-Sobrido L.
2012.
Нуклеопротеины аренавируса предотвращают активацию ядерного фактора каппа B. J Virol
86:8185–8197. doi: 10.1128/ОВИ.07240-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Hastie KM, Kimberlin CR, Zandonatti MA, MacRae IJ, Saphire EO.
2011.
Структура нуклеопротеина вируса Ласса демонстрирует специфичную для дцРНК активность экзонуклеазы от 3’ до 5’, необходимую для подавления иммунитета. Proc Natl Acad Sci U S A
108:2396–2401. doi: 10.1073/pnas.1016404108. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Lenz O, ter Meulen J, Klenk HD, Seidah NG, Garten W.
2001.
Предшественник гликопротеина вируса Ласса GP-C протеолитически процессируется субтилазой SKI-1/S1P. Proc Natl Acad Sci U S A
98:12701–12705. doi: 10.1073/pnas.221447598. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Jae LT, Raaben M, Herbert AS, Kuehne AI, Wircnianski AS, Soh TK, Stubbs SH, Janssen H, Damme M, Saftig P, Whelan SP, Dye JM, Brummelkamp TR.
2014.
Для проникновения вируса Ласса требуется триггер-индуцированное переключение рецепторов. Наука
344: 1506–1510. doi: 10.1126/наука.1252480. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Коэн-Дваши Х., Коэн Н., Исраэл Х., Дискин Р.
2015.
Молекулярный механизм распознавания LAMP1 вирусом Ласса. Джей Вирол
89:7584–7592. doi: 10.1128/ОВИ.00651-15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Pinschewer DD, Perez M, de la Torre JC.
2005.
Двойная роль межгенной области вируса лимфоцитарного хориоменингита в терминации транскрипции и размножении вируса. Джей Вирол
79:4519–4526. doi: 10.1128/ОВИ.79.7.4519-4526.2005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Ивасаки М., Нго Н., Кубитт Б., Тейхаро Дж. Р., де ла Торре Дж. К.
2015.
Общая молекулярная стратегия разработки живых аттенуированных вакцин против аренавируса. Джей Вирол
89: 12166–12177. doi: 10.1128/ОВИ.02075-15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Iwasaki M, Cubitt B, Sullivan BM, de la Torre JC.
2016.
Высокая степень пластичности последовательности некодирующей межгенной области (IGR) аренавируса позволяет использовать невирусный универсальный синтетический IGR для аттенуации аренавирусов. Джей Вирол
90: 3187–3197. doi: 10.1128/ОВИ.03145-15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Бержерон Э., Чакрабарти А.К., Берд Б.Х., Додд К.А., Макмаллан Л.К., Спиропулу С.Ф., Николь С.Т., Альбариньо К.Г.
2012.
Обратное генетическое восстановление вируса Лухо и роль вторичных структур вирусной РНК в эффективном росте вируса. Джей Вирол
86:10759–10765. doi: 10.1128/ОВИ.01144-12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Golden JW, Beitzel B, Ladner JT, Mucker EM, Kwilas SA, Palacios G, Hooper JW.
2017.
Аттенуированный вирус Мачупо с нарушенной межгенной областью L-сегмента защищает морских свинок от смертельной инфекции вирусом Гуанарито. научный представитель
7:4679. doi: 10.1038/s41598-017-04889-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Falzarano D, Feldmann H.
2013.
Вакцины против вирусных геморрагических лихорадок – достижения и недостатки. Карр Опин Вирол
3: 343–351. doi: 10.1016/j. coviro.2013.04.007. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Caì Y, Iwasaki M, Beitzel BF, Yú S, Postnikova EN, Cubitt B, DeWald LE, Radoshitzky SR, Bollinger L, Jahrling PB, Palacios Г. Ф., де ла Торре Дж. К., Кун Дж. Х.
2018.
Рекомбинантный вирус Ласса, экспрессирующий зеленый флуоресцентный белок, в качестве инструмента для высокопроизводительного скрининга лекарств и анализов нейтрализующих антител. Вирусы
10:E655. дои: 10.3390/v10110655. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Юн Н.Е., Серегин А.В., Уокер Д.Х., Попов В.Л., Уокер А.Г., Смит Дж.Н., Миллер М., де ла Торре Дж.К., Смит Дж.К., Борисевич В. , Fair JN, Wauquier N, Grant DS, Bockarie B, Bente D, Paessler S.
2013.
Мыши, у которых отсутствует функциональный STAT1, очень восприимчивы к летальному заражению вирусом Ласса. Джей Вирол
87:10908–10911. doi: 10.1128/ОВИ.01433-13. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Jahrling PB, Smith S, Hesse RA, Rhoderick JB.
1982.
Патогенез вирусной инфекции Ласса у морских свинок. Заразить иммунитет
37: 771–778. doi: 10.1128/IAI.37.2.771-778.1982. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Liu DX, Perry DL, DeWald LE, Cai Y, Hagen KR, Cooper TK, Huzella LM, Hart R, Bonilla A, Bernbaum JG, Janosko К.Б., Адамс Р., Джонсон Р.Ф., Кун Дж.Х., Шнелл М.Дж., Крозье И., Ярлинг П.Б., де ла Торре Дж.К.
2019.
Персистенция вируса Ласса, связанная с тяжелым системным артериитом у выздоравливающих морских свинок ( Cavia porcellus ). J заразить Dis
219: 1818–1822. doi: 10.1093/infdis/jiy641. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Abreu-Mota T, Hagen KR, Cooper K, Jahrling PB, Tan G, Wirblich C, Johnson RF, Schnell MJ.
2018.
Нейтрализующие антитела, вырабатываемые рекомбинантной вакциной Ласса против бешенства, имеют решающее значение для защиты от лихорадки Ласса. Нац Коммуна
9:4223. doi: 10.1038/s41467-018-06741-w. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Safronetz D, Rosenke K, Westover JB, Martellaro C, Okumura A, Furuta Y, Geisbert J, Saturday G, Komeno T, Geisbert TW, Feldmann Н, Гоуэн Б.Б.
2015.
Противовирусный препарат широкого спектра действия фавипиравир защищает морских свинок от смертельной инфекции вирусом Ласса после начала заболевания. научный представитель
5:14775. дои: 10.1038/srep14775. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Адепою П.
2019.
Нескончаемая война Нигерии с лихорадкой Ласса. Ланцет
393: 627–628. doi: 10.1016/S0140-6736(19)30357-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Сиддл К.Дж., Эромон П., Барнс К.Г., Мехта С., Огузи Ю.Ю., Одиа И., Шаффнер С.Ф., Винницки С.М., Шах Р.Р., Ку Дж., Воль С., Брехио П., Ируолагбе К., Айепада Дж., Уйигэ Э., Ахиломен П., Оконофуа Г., Е С., Кайоде Т., Аджогбасиле Ф., Уванибе Дж., Гайе А., Момох М., Чак Б., Котляр Д., Картер А., Глэдден-Янг А., Фрейе К.А., Омореги О., Осиеми Б., Муоебонам Э.Б., Айренде М., Энигбе Р., Эбо Б., Носамифан И. , Олуний П., Некоуи М., Огбайни-Эмовон Э., Гарри Р.Ф., Андерсен К.Г., Парк ди-джей, Йозвяк Н.Л., Акпеде Г., Ихеквезу К., Томори О., Окогбенин С., Фоларин О.А., Окохере П.О., Макиннис Б.Л., Сабети П.С., Хаппи КТ.
2018.
Геномный анализ вируса Ласса во время роста числа случаев заболевания в Нигерии в 2018 г. N Engl J Med
379: 1745–1753. дои: 10.1056/NEJMoa1804498. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Salami K, Gouglas D, Schmaljohn C, Saville M, Tornieporth N.
2019.
Обзор вакцин-кандидатов против лихорадки Ласса. Карр Опин Вирол
37:105–111. doi: 10.1016/j.coviro.2019.07.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Baize S, Marianneau P, Loth P, Reynard S, Journeaux A, Chevallier M, Tordo N, Deubel V, Contamin H.
2009.
Ранний и сильный иммунный ответ связан с контролем репликации вируса и восстановлением у инфицированных вирусом Ласса обезьян-крабоедов. Джей Вирол
83:5890–5903. doi: 10.1128/ОВИ.01948-08. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Fisher-Hoch SP, Hutwagner L, Brown B, McCormick JB.
2000.
Эффективная вакцина против лихорадки Ласса. Джей Вирол
74:6777–6783. doi: 10.1128/jvi.74.15.6777-6783.2000. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Робинсон Дж. Э., Хасти К. М., Кросс Р. В., Йенни Р. Е., Эллиотт Д. Х., Руэль Дж. А., Каннадка С. Б., Смира А. А., Гарри С. Э., Брэдли Б. Т., Ю. Х., Шаффер Дж. Г., Бойсен М. Л., Хартнетт Дж. Н., Зандонатти М. А., Роуленд М. М., Генрих М. Л., Мартинес-Собридо Л., Ченг Б., де ла Торре Х. К., Андерсен К. Г., Гоба А., Момох М., Фулла М., Гбаки М., Канне Л. , Корома В.Дж., Фонни Р., Джалло С.К., Каргбо Б., Ванди М.А., Гбетува М., Икпонмвоса О., Асогун Д.А., Окохере П.О., Фолларин О.А., Шиффелин Д.С., Питтс К.Р., Гейсберт Д.Б., Кулакоски П.С., Уилсон Р.Б., Хаппи К.Т., Сабети ПК, Гевао С.М., Хан С.Х., Грант Д.С., Гейсберт Т.В., Сапфир Э.О., Бранко Л.М., Гарри Р.Ф.
2016.
Большинство нейтрализующих моноклональных антител человека нацелены на новые эпитопы, для которых требуются обе субъединицы гликопротеина вируса Ласса. Нац Коммуна
7:11544. дои: 10.1038/ncomms11544. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Кросс РВ, Мире К.Э., Бранко Л.М., Гейсберт Дж.Б., Роуленд М.М., Генрих М.Л., Гоба А., Момох М., Грант Д.С., Фулла М., Хан С.Х., Робинсон Дж.Е., Гейсберт Т.В., Гарри Р.Ф.
2016.
Лечение вирусной инфекции Ласса у беспородных морских свинок первыми в своем классе человеческими моноклональными антителами. Противовирусный рез
133: 218–222. doi: 10.1016/j.antiviral.2016.08.012. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Mire CE, Cross RW, Geisbert JB, Borisevich V, Agans KN, Deer DJ, Heinrich ML, Rowland MM, Goba A, Momoh M, Boisen М.Л., Грант Д.С., Фулла М., Хан С.Х., Фентон К.А., Робинсон Дж.Е., Бранко Л.М., Гарри Р.Ф., Гейсберт Т.В.
2017.
Терапия человеческими моноклональными антителами защищает нечеловеческих приматов от прогрессирующей лихорадки Ласса. Нат Мед
23: 1146–1149. doi: 10.1038/nm.4396. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Zapata JC, Medina-Moreno S, Guzmán-Cardozo C, Salvato MS.
2018.
Улучшение широты иммунного ответа хозяина на вирус Ласса. Патогены
7:E84. doi: 10.3390/pathogens7040084. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Russier M, Pannetier D, Baize S.
2012.
Иммунные реакции и инфекция вирусом Ласса. Вирусы
4: 2766–2785. дои: 10.3390/v4112766. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Фишер-Хох С.П., Маккормик Дж.Б., Ауперин Д., Браун Б.Г., Кастор М., Перес Г., Руо С., Конати А., Браммер Л., Бауэр С.
1989.
Защита макак-резусов от смертельной лихорадки Ласса путем вакцинации рекомбинантным вирусом осповакцины, содержащим ген гликопротеина вируса Ласса. Proc Natl Acad Sci U S A
86:317–321. doi: 10.1073/pnas.86.1.317. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Salvato MS, Domi A, Guzman-Cardozo C, Medina-Moreno S, Zapata JC, Hsu Hsu, McCurley N, Basu R, Hauser M, Хеллерштейн М., Гиракху Ф.
2019.
Однократная доза модифицированной осповакцины Анкары, экспрессирующей вирусоподобные частицы Ласса, защищает мышей от летального заражения внутримозговым вирусом. Патогены
8:Е133. doi: 10.3390/pathogens8030133. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Geisbert TW, Jones S, Fritz EA, Shurtleff AC, Geisbert JB, Liebscher R, Grolla A, Ströher U, Fernando L, Daddario KM, Guttieri М.С., Моте Б.Р., Ларсен Т., Хенсли Л.Е., Ярлинг П.Б., Фельдманн Х.
2005.
Разработка новой вакцины для профилактики лихорадки Ласса. ПЛОС Мед
2:e183. doi: 10.1371/journal.pmed.0020183. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Сафронец Д., Мире С., Розенке К., Фельдманн Ф., Хэддок Э., Гейсберт Т., Фельдманн Х.
2015.
Рекомбинантная вакцина против лихорадки Ласса на основе вируса везикулярного стоматита защищает морских свинок и макак от заражения географически и генетически различными вирусами Ласса. PLoS Negl Trop Dis
9:e0003736. doi: 10.1371/journal.pntd.0003736. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Carnec X, Mateo M, Page A, Reynard S, Hortion J, Picard C, Yekwa E, Barrot L, Barron S, Vallve A, Raoul Х. , Карбонелле С., Феррон Ф., Бейз С.
2018.
Вакцинная платформа против аренавирусов на основе рекомбинантного гиператтенуированного вируса Mopeia, экспрессирующего гетерологичные гликопротеины. Джей Вирол
92:e02230-17. doi: 10.1128/ОВИ.02230-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Bredenbeek PJ, Molenkamp R, Spaan WJM, Deubel V, Marianneau P, Salvato MS, Moshkoff D, Zapata J, Тихонов I, Patterson J, Carrion Р, Тицер А, Браски К, Лукашевич И.С.
2006.
Рекомбинантная вакцина против желтой лихорадки 17D, экспрессирующая гликопротеины вируса Ласса. Вирусология
345: 299–304. doi: 10.1016/j.virol.2005.12.001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Jiang X, Dalebout TJ, Bredenbeek PJ, Carrion R Jr, Brasky K, Patterson J, Goicochea M, Bryant J, Salvato MS, Lukashevich IS.
2011.
Вакцины против желтой лихорадки 17D, экспрессирующие гликопротеины GP1 и GP2 вируса Ласса, обеспечивают защиту морских свинок от летального исхода. вакцина
29: 1248–1257. doi: 10.1016/j.vaccine.2010.11.079. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Матео М., Рейнард С., Карнек Х., Журно А., Байе Н., Шеффер Дж., Пикард С., Леграс-Лашуер С., Аллан Р., Пертем Э. , Хиллион К.-Х., Пьетросемоли Н., Диллис М.А., Барро Л., Валлве А., Бэррон С., Феллманн Л., Гайяр Дж.С., Арменго Дж., Карбонелле С., Рауль Х., Танги Ф., Бейз С.
2019.
Вакцины, индуцирующие иммунитет к гликопротеину и нуклеопротеину вируса Ласса, защищают макак после однократного введения. Sci Transl Med
11:eaaw3163. doi: 10.1126/scitranslmed.aaw3163. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

59. Лукашевич И.С., Паттерсон Дж., Каррион Р., Мошкофф Д., Тисер А., Запата Дж., Браски К., Гейгер Р., Хаббард Г.Б., Брайант Дж., Сальвато М.С.
2005.
Живая аттенуированная вакцина против лихорадки Ласса, полученная путем реассортации вирусов Ласса и Мопеи. Джей Вирол
79:13934–13942. doi: 10.1128/ОВИ.79.22.13934-13942.2005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Каррион Р. Младший, Паттерсон Дж. Л., Джонсон С., Гонсалес М., Морейра С. Р., Тисер А., Браски К., Хаббард Г. Б., Мошкофф Д., Запата Дж., Сальвато М.С., Лукашевич И.С.
2007.
МЛ29реассортантный вирус защищает морских свинок от отдаленно родственного нигерийского штамма вируса Ласса и может обеспечивать стерилизующий иммунитет. вакцина
25:4093–4102. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.02.038. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Лукашевич И.С., Каррион Р. мл., Сальвато М.С., Мэнсфилд К., Браски К., Запата Дж., Каиро С., Гойкочеа М., Хузиен Г.Э., Тисер А., Брайант Дж., Дэвис Х., Хаммами Р., Майда М., Джетт М., Паттерсон Дж.
2008.
Безопасность, иммуногенность и эффективность ML29Реассортантная вакцина против лихорадки Ласса у мелких нечеловеческих приматов. вакцина
26:5246–5254. doi: 10.1016/j.vaccine.2008.07.057. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Zapata JC, Poonia B, Bryant J, Davis H, Ateh E, George L, Crasta O, Zhang Y, Slezak T, Jaing C, Pauza CD, Гойкочеа М. , Мошкофф Д., Лукашевич И.С., Сальвато М.С.
2013.
Аттенуированная вакцина Ласса у макак-резусов, инфицированных ВИО, не сохраняется и не вызывает аренавирусную болезнь, но вызывает специфический иммунитет к вирусу Ласса. Вирол Дж.
10:52. дои: 10.1186/1743-422X-10-52. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Хаттнер А., Дайер Дж.-А., Йерли С., Комбескюр С., Одерсет Ф., Десмёль Дж., Эйкманн М., Финкх А., Гонсалвес А.Р., Хупер Дж.В., Кая Г., Кралинг В., Квилас С., Лемэтр Б., Матти А., Сильвера P, Becker S, Fast PE, Moorthy V, Kieny MP, Kaiser L, Siegrist CA; Консорциум ВСВ-Эбола. 2015.
Влияние дозы на безопасность и иммуногенность вакцины-кандидата против вируса Эбола: рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование фазы 1/2. Ланцет Infect Dis
15:1156–1166. doi: 10.1016/S1473-3099(15)00154-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Энао-Рестрепо А.М., Камачо А., Лонгини И.М., Уотсон Х., Эдмундс В.Дж., Эггер М. , Кэрролл М.В., Дин Н.Е., Диатта И., Думбия М., Драгес Б., Дюраффур С., Энвере Г., Граис Р., Гюнтер С. , Гселл П.С., Хоссманн С., Уотл С.В., Конде М.К., Кейта С., Коне С., Куйсма Э., Левин М.М., Мандал С., Може Т., Норхейм Г., Риверос Х., Сума А., Трелле С., Викари А.С., Рёттинген Дж.А., Киини М-П.
2017.
Эффективность и действенность вакцины с вектором rVSV в профилактике болезни, вызванной вирусом Эбола: окончательные результаты вакцинации Гвинейского кольца, открытое, кластерное рандомизированное исследование (Ebola Ça Suffit!). Ланцет
389: 505–518. doi: 10.1016/S0140-6736(16)32621-6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Cai Y, Ye C, Cheng B, Nogales A, Iwasaki M, Yu S, Cooper K, Liu DX, Hart R, Adams R, Brady Т., Постникова Е.Н., Курц Дж., Сент-Клер М., Кун Дж.Х., де ла Торре Х.С., Мартинес-Собридо Л.
2020.
Живая аттенуированная вакцина против лихорадки Ласса основана на деоптимизации кодонов гена вирусного гликопротеина. mBio
11:e00039-20. doi: 10. 1128/mBio.00039-20. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Ченг Б.Я., Ортис-Риано Э., Ногалес А., де ла Торре Х.С., Мартинес-Собридо Л.
2015.
Разработка живых аттенуированных аренавирусных вакцин на основе деоптимизации кодонов. Джей Вирол
89:3523–3533. doi: 10.1128/ОВИ.03401-14. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Cheng BYH, Nogales A, de la Torre JC, Martinez-Sobrido L.
2017.
Разработка живых аттенуированных аренавирусных вакцин на основе деоптимизации кодонов вирусного гликопротеина. Вирусология
501:35–46. doi: 10.1016/j.virol.2016.11.001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Кэшман К.А., Уилкинсон Э.Р., Воллен С.Е., Шамблин Дж.Д., Зелко Дж.М., Беарсс Дж.Дж., Зенг Х, Бродерик К.Е., Шмальджон К.С.
2017.
ДНК-вакцины вызывают стойкий защитный иммунитет против индивидуального или одновременного заражения вирусами Ласса и Эбола у морских свинок. Hum Вакцина Иммунотер
13:3010–3019.